Оссификация собственных тканей при дентальной имплантации с применением фрагментов аутокости

Цель исследования – изучить морфологические результаты имплантации с привнесением фрагментов аутокости в мягкие ткани, ушитые над изделием.

Материал и методы. Морфологическими методами с применением иммуногистохимии для выявления клеток CD68+ изучали состояние тканей десны у 95 пациентов до имплантации и через 4–6 мес. после установки винтовых дентальных имплантатов по стандартной технологии (n = 42) или с размещением фрагментов аутокости, образовавшихся в процессе препаровальных процедур, над имплантатом (n = 47).

Результаты и их обсуждение. Добавление частиц аутокости в ткани рядом с внутрикостным имплантатом способствует формированию над ним толстой и прочной кости, надежно изолирующей изделие от полости рта, повреждения при жевании и контаминации микроорганизмами. Через 4–6 мес. после имплантации в тканях рядом с инородным телом и оставшимися костными фрагментами отсутствуют признаки воспалительного процесса (сосудистые реакции, лейкоцитарная инфильтрация и формирование соединительнотканной капсулы) и макрофагального ответа с миграцией фагоцитов и образованием гигантских многоядерных форм.

Заключение. В случае привнесения мелких фрагментов аутокости, образовавшихся при подготовке ложа для внедрения имплантата в мягкие ткани над изделием во время операции, через 4–6 мес. происходит формирование плотного массива компактной кости с широкими остеонами и очень редко расположенными Гаверсовыми каналами. Фрагменты кости, не включенные в костную капсулу, или лизируются с последующим обызвествлением, или постепенно мигрируют через ткани, даже костные, и элиминируются наружу. В процессе формирования костного купола над имплантатом возможно появление объектов, похожих на дентин.

1. Sharma S., Bano S., Ghosh A.S., Mandal M., Kim H.W., Dey T., Kundu S.C. Silk fibroin nanoparticles support in vitro sustained antibiotic release and osteogenesis on titanium surface. Nanomedicine. 2016;12(5):1193–1204. doi: 10.1016/j.nano.2015.12.385

2. Caparrós C., Ortiz-Hernandez M., Molmeneu M., Punset M., Calero J.A., Aparicio C., Fernández-Fairén M., Perez R., Gil F.J. Bioactive macroporous titanium implants highly interconnected. J. Mater. Sci. Mater. Med. 2016;27(10):151. doi: 10.1007/s10856-016-5764-8

3. Майбородин И.В., Майбородина В.И., Шеплев Б.В., Шаркеев Ю.П., Седельникова М.Б., Павлов В.В., Базлов В.А., Анастасиева Е.А., Ефименко М.В., Кирилова И.А., Корыткин А.А. Морфологическая оценка остеоинтеграции титановых имплантатов с Ag- и Zn-содержащими кальций-фос-фатными покрытиями. Травматол. и ортопедия России. 2025;31(1):85–97. doi: 10.17816/2311-2905-17604

4. El-Wassefy N.A., Reicha F.M., Aref N.S. Electro-chemical deposition of nano hydroxyapatite-zinc coating on titanium metal substrate. Int. J. Implant. Dent. 2017;3(1):39. doi: 10.1186/s40729-017-0095-1

5. Николаев Н.С., Любимова Л.В., Пчелова Н.Н., Преображенская Е.В., Алексеева А.В. Использование имплантатов с покрытием на основе двумерно-упорядоченного линейно-цепочечного углерода, легированного серебром, для лечения перипротезной инфекции. Травматол. и ортопедия России. 2019;25(4):98–108. doi: 10.21823/2311-2905-2019-25-4-98-108

6. Liu R., Memarzadeh K., Chang B., Zhang Y., Ma Z., Allaker R.P., Ren L., Yang K. Antibacterial effect of copper-bearing titanium alloy (Ti-Cu) against Streptococcus mutans and Porphyromonas gingivalis. Sci. Rep. 2016;6:29985. doi: 10.1038/srep29985

7. Heo D.N., Ko W.K., Lee H.R., Lee S.J., Lee D., Um S.H., Lee J.H., Woo Y.H., Zhang L.G., Lee D.W., Kwon I.K. Titanium dental implants surface-immobilized with gold nanoparticles as osteoinductive agents for rapid osseointegration. J. Colloid Interface Sci. 2016:469:129–137. doi: 10.1016/j.jcis.2016.02.022

8. Maiborodin I., Shevela A., Matveeva V., Morozov V., Toder M., Krasil’nikov S., Koryakina A., Shevela A., Yanushevich O. First experimental study of the influence of extracellular vesicles derived from multipotent stromal cells on osseointegration of dental implants. Int. J. Mol. Sci. 2021;22(16):8774. doi: 10.3390/ijms22168774

9. Майбородин И.В., Шевела А.А., Марчуков С.В., Морозов В.В., Матвеева В.А., Майбородина В.И., Новиков А.М., Торнуев Ю.В., Чурин Б.В., Шевела А.И. Пролонгация очищения поврежденных тканей от детрита в условиях применения экзосом мультипотентных стромальных клеток. Новости хирургии. 2021;29(4):401–411. doi: 10.18484/2305-0047.2021.4.401.

10. Schulze-Späte U., Dietrich T., Wu C., Wang K., Hasturk H., Dibart S. Systemic vitamin D supplementation and local bone formation after maxillary sinus augmentation - a randomized, double-blind, placebo-controlled clinical investigation. Clin. Oral Implants Res. 2016;27(6):701–706. doi: 10.1111/clr.12641

11. Майбородин И.В., Саркисянц Б.К., Шеплев Б.В., Майбородина В.И., Шевела А.А. Оссификация десны над внутрикостным имплантатом. Арх. патол. 2024;86(6):70–73. doi: 10.17116/patol20248606170

12. Zhang Y., Al-Maawi S., Wang X., Sader R., Kirkpatrick C., Ghanaati S. Biomaterial-induced multinucleated giant cells express proinflammatory signaling molecules: A histological study in humans. J. Biomed. Mater. Res. A. 2019;107(4):780–790. doi: 10.1002/jbm.a.36594

13. Tanneberger A.M., Al-Maawi S., Herrera-Vizcaíno C., Orlowska A., Kubesch A., Sader R., Kirkpatrick C.J., Ghanaati S. Multinucleated giant cells within the in vivo implantation bed of a collagen-based biomaterial determine its degradation pattern. Clin. Oral Investig. 2021;25(3):859–873. doi: 10.1007/s00784-020-03373-7

14. Vautrin M., Moerenhout K., Udin G., Borens O. Perioperative contamination of orthopaedic polyethylene implants, targeting devices and arthroscopes. Experts’ decision tree and literature review. J. Bone Jt. Infect. 2019;4(2):65–71. doi: 10.7150/jbji.30613

15. Wang D., Wang A., Wu F., Qiu X., Li Y., Chu J., Huang W.C., Xu K., Gong X., Li S. Sox10+ adult stem cells contribute to biomaterial encapsulation and microvascularization. Sci. Rep. 2017;7:40295. doi: 10.1038/srep40295

16. Zhang Y., Zhang H., Xiao Z., Yuan G., Yang G. IPO7 Promotes odontoblastic differentiation and inhibits osteoblastic differentiation through regulation of RUNX2 expression and translocation. Stem. Cells. 2022;40(11):1020–1030. doi: 10.1093/stmcls/sxac055