Изучение влияния экстракта Astragalus vulpinus на процессы перекисного окисления липидов в гипоталамической области на модели липополисахаридного иммунного стресса

Экспериментальное исследование посвящено изучению влияния экстракта Astragalus vulpinus на процессы перекисного окисления липидов в гипоталамической области в условиях липополисахаридного иммунного стресса. Материал и методы. Эксперименты выполнены на белых крысах – самцах 6–8-месячного возраста. Во всех сериях экспериментов животные были разбиты на группы (n = 10): первая – контрольные особи, получавшие дистиллированную воду в эквивалентном объеме; вторая – крысы с моделью иммунного стресса; третья – животные, получавшие на фоне иммунного стресса экстракт Astragalus vulpinus. Исследуемый экстракт и дистиллированную воду вводили один раз в сутки внутрижелудочно с помощью зонда в дозе 50 мг/кг в течение 14 дней. Иммунный стресс формировали путем однократного внутрибрюшинного введения липополисахарида – пирогенала, выделенного из микробных клеток Salmonella typhi. Интенсивность процессов свободнорадикального окисления изучали по содержанию продуктов, реагирующих с тиобарбитуровой кислотой (ТБК-РП), спонтанной и аскорбатзависимой скорости перекисного окисления липидов, а также определяли активность каталазы. Результаты и их обсуждение. Установлено, что иммунный стресс сопровождается активацией процессов свободнорадикального окисления, о чем свидетельствует повышение концентрации ТБК-РП и активности фермента антиоксидантной защиты организма – каталазы. Оценка влияния экстракта травы Astragalus vulpinus на интенсивность свободнорадикальных окислительных процессов в гипоталамической области на фоне действия липополисахарид-индуцированного иммунного стресса показала, что он проявляет выраженные стресспротекторные и антиоксидантные свойства, характеризующиеся изменением интенсивности процессов липидной пероксидации и увеличением активности каталазы в ткани гипоталамической области головного мозга. Заключение. Доказано, что экстракт травы Astragalus vulpinus проявляет антиоксидантное действие, восстанавливая интенсивность свободнорадикальных окислительных процессов.

1. Паюшина О.В. Локализация и функции мезенхимных стромальных клеток in vivo. Журн. общей биологии. 2015; 76 (2): 161–172.

2. Лыков А.П., Бондаренко Н.А., Повещенко О.В., Миллер Т.В., Повещенко А.Ф., Суровцева М.А., Бгатова Н.П., Коненков В.И. Перспективность использования клеточного продукта для терапии кожных дефектов при сахарном диабете. Клеточ. технол. в биол. и мед. 2017; 3: 175–177.

3. Taguchi T., Borjesson D.L., Osmond C., Griffon D.J. Influence of donor’s age on immunomodulatory properties of canine adipose tissue-derived mesenchymal stem cells. Stem Cells Dev. 2019; 28 (23): 1562–1571. doi: 10.1089/scd.2019.0118

4. Hu R., Cheng Y., Jing H., Wu H. Erythropoietin promotes the protective properties of transplanted endothelial progenitor cells against acute lung injury via PI3K/Akt pathway. Shock. 2014; 42 (4): 327–336. doi: 10.1097/SHK.0000000000000216

5. Korolenko T.A., Goncharova N.V., Karmatskikh O.L., Johnston T.P., Machova E., Nescakova Z., Bgatova N.P., Lykov A.P., Shintyapina A.B., Maiborodin I.V. Hypolipidemic effect of mannans from C. albicans serotype A and B in acute hyperlipidemia in mice. Int. J. Biol. Macromol. 2018; 107: 2385–2394. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2017.10.111

6. Красина М.Е., Кошелева Н.В., Липина Т.В., Карганов М.Ю., Медведева М.А., Лебедева В.А., Зурина И.М., Сабурина И.Н. Восстановительный потенциал суспензии и сфероидов мультипотентных мезенхимных стромальных клеток пупочного канатика человека на модели инфаркта миокарда крыс. Клеточ. технол. в биол. и мед. 2020; 2: 89–97.

7. Повещенко О.В., Повещенко А.Ф., Лыков А.П., Бондаренко Н.А., Дружинина Ю.В., Коненков В.И. Мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки для терапии дисфункции лимбального эпителия. Бюл. СО РАМН. 2014; 34 (3): 48–55.

8. Jurgens W.J., Oedayrajsingh-Varma M.L., Helper M.N., Zandiehdoulabi B., Schouten T.E., Kuik D.J., Ritt M.J., van Milligen F.J. Effect of tissue-harvesting site on yield of stem cells derived from adipose tissue: implications for cell-based therapies. Cell Tissue Res. 2008; 332 (3): 415–426. doi: 10.1007/s00441-007-0555-7

9. Zhang B., Wang F., Deng L., Dun A., Dong L., Li J., Yang H. [Isolating and culturing rat marrow mesenchymal stem cells and studying their phenotypicaland functional properties]. Sichuan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2003; 34 (4): 738–741. [In Chinese].

10. Chen Y., Hu Y., Yang L., Zhou J., Tang Y.Y., Zheng L.L. Effects of different concentrations of glucose on the osteogenic differentiation of orofacial bone mesenchymal stem cells. Sichuan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2016; 47 (5): 679–684. [In Chinese].

11. Zhou S., Liu Y.G., Zhang Y., Hu J.M., Liu D., Chen H., Li M., Guo Y., Fan L.P., Li L.Y., Zhao M. Bone mesenchymal stem cells pretreated with erythropoietin enhance the effect to ameliorate cyclosporine A-induced nephrotoxicity in rats. J. Cell Biochem. 2018; 119 (10): 8220–8232. doi: 10.1002/jcb.26833