Preview

Сибирский научный медицинский журнал

Расширенный поиск

Фармакологические свойства гиалуронидазы и возможности ее клинического применения в офтальмологии

https://doi.org/10.15372/SSMJ20200402

Полный текст:

Аннотация

Заболевания роговицы являются четвертой по значимости причиной слепоты в мире, на их долю приходится примерно 5 % случаев. Существующие методы лечения более чем в 30 % случаев не дают полного терапевтического эффекта и при купировании процесса заканчиваются стойким нарушением прозрачности роговицы, снижением или полной потерей зрительных функций. Отсутствие эффективных средств, доказательно восстанавливающих прозрачность роговицы, определяет актуальность поиска современных препаратов и способов их доставки, возможностей усиления терапевтического воздействия. Рассматриваются возможности использования в офтальмологии препаратов гиалуронидазы на основе изучения ее биологических и фармакологических свойств. Фермент катализирует расщепление кислых мукополисахаридов, в том числе гиалуроновой кислоты, гидролизуя гликозидную связь β(1→4), биологический эффект определяется молекулярной массой образовавшихся фрагментов: высокомолекулярные обладают антиангиогенными свойствами, повышенной способностью связывать фибриноген, противовоспалительным и иммуносупрессивным действием, а низкомолекулярные проявляют провоспалительную активность и способствуют ангиогенезу. Барьерная функция роговицы обеспечивается особенностями анатомического строения, при этом ее регенерация с формированием помутнения сопровождается избыточной экспрессией и миграцией в строму цитокинов TGF-β и PDGF, активацией миофибробластов и формированием фибропролиферативного ответа. Высокая противовоспалительная, иммуномодулирующая, регенеративная и антифибротическая активность гиалуронидазы, возможность ее воздействия на сложный патофизиологический каскад деструктивных процессов и минимизация процесса рубцевания служат стимулом для более масштабных экспериментальных и клинических исследований по разработке новых методов лечения офтальмологических заболеваний с применением препаратов гиалуронидазы.

Об авторах

В. Е. Забанова
Государственная Новосибирская областная клиническая больница; Новосибирский государственный медицинский университет Минздрава России
Россия
Виктория Евгеньевна Забанова


А. Ж. Фурсова
Государственная Новосибирская областная клиническая больница; Новосибирский государственный медицинский университет Минздрава России
Россия
Анжелла Жановна Фурсова, д.м.н.


П. Г. Мадонов
Новосибирский государственный медицинский университет Минздрава России
Россия
Павел Геннадьевич Мадонов, д.м.н.


Список литературы

1. World Health Organization Blindness and vision impairment. Published October 11, 2018. Available at: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/blindness-and-visual-impairment

2. Ziaei M., Barsam A., Shamie N., Vroman D., Kim T., Donnenfeld E.D., Holland E.J., Kanellopoulos J., Mah F.S., Randleman J.B., Daya S., Güell J. ASCRS Cornea Clinical Committee. Reshaping procedures for the surgical management of corneal ectasia. J. Cataract Refract. Surg. 2015; 41 (4): 842–872. doi: 10.1016/j.jcrs.2015.03.010

3. Хабриев Р.У., Камаев Н.О., Данилова Т.И., Кахоян Е.Г. Особенности действия гиалуронидаз различного происхождения на соединительную ткань. Биомед. химия. 2016; 62 (1). 82–88. doi: 10.18097/PBMC20166201082

4. Meyer K. Hyaluronidases. In: The enzymes. Ed. P.D. Boyer. 3rd ed, v. V. N.Y.: Acad. Press, 1971. 307–320.

5. Meyer K., Palmer J.W. The polysaccharide of the vitreous humor. J. Biol. Chem. 1934; 107: 629–634.

6. Meyer K., Smyth E.M., Dawson M.H. The isolation of a mucopolysaccharide synovial fluid. J. Biol. Chem. 1939; 128: 319–327.

7. Chen W.Y., Abatangelo G. Functions of hyaluronan in wound repair. Wound Repair Regen. 1999; 7: 79–89. doi: 10.1046/j.1524-475x.1999.00079.x

8. Day A.J., de la Motte C.A. Hyaluronan cross-linking: a protective mechanism in inflammation. Trends Immunol. 2005; 26 (12): 637–643. doi: 10.1016/j.it.2005.09.009

9. Nagai N., Ito Y., Okamoto N., Shimomura Y. In vitro evaluation of corneal damages after instillation of eye drops using rat debrided corneal epithelium: chan­ges in corneal damage of benzalkonium chloride by addition of thickening agent. Yakugaku Zasshi. 2012; 132 (7): 837–843. doi: 10.1248/yakushi.132.837

10. Noble P.W. Hyaluronan and its catabolic pro­ducts in tissue injury and repair. Matrix Biol. 2002; 21 (1): 25–29. doi: 10.1016/s0945-053x(01) 00184-6

11. Aya K.L., Stern R. Hyaluronan in wound healing: rediscovering a major player. Wound Repair Regen. 2014; 22 (5): 579–593. doi: 10.1111/wrr.12214

12. West D.C., Hampson I.N., Arnold F., Kumar S. Angiogenesis induced by degradation products of hyaluronic acid. Science. 1985; 228 (4705): 1324–1326. doi: 10.1126/science.2408340

13. Slevin M., Kumar S., Gaffney J. Angiogenic oli­gosaccharides of hyaluronan induce multiple signaling pathways affecting vascular endothelial cell mitogenic and wound healing responses. J. Biol. Chem. 2002; 277 (43): 41046–41059. doi: 10.1074/jbc.M109443200

14. Saikia P., Roychowdhury S., Bellos D., Pollard K., McMullen M., McCullough R., McCullough A., Gholam P., de la Motte C., Nagy L.E. Hyaluronic acid 35 normalizes TLR4 signaling in Kupffer cells from ethanol-fed rats via regulation of microRNA291b and its target Tollip. Sci. Rep. 2017; 7 (1): 15671. doi: 10.1038/s41598-017-15760-4

15. Bollyky P.L., Wu R.P., Falk B.A., Lord J.D., Long S.A., Preisinger A., Teng B., Holt G.E., Standifer N.E., Braun K.R., Xie C.F., Samuels P.L., Vernon R.B., Gebe J.A., Wight T.N., Nepom G.T. ECM components guide IL-10 producing regulatory T-cell (TR1) induction from effector memory T-cell precursors. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2011; 108 (19): 7938–7943. doi: 10.1073/pnas.1017360108

16. Palmieri B., Rottigni V., Iannitti T. Preliminary study of highly cross-linked hyaluronic acid-based combination therapy for management of knee osteoarthritis-related pain. Drug Des. Devel. Ther. 2013; 7: 7–12. doi: 10.2147/DDDT.S37330

17. Cagini C., Torroni G., Fiore T., Cerquaglia A., Lupidi M., Aragona P., Iaccheri B. Tear film stability in sjögren syndrome patients treated with hyaluronic acid versus crosslinked hyaluronic acid-based eye drops. J. Ocul. Pharmacol. Ther. 2017; 33 (7): 539–542. doi: 10.1089/jop.2016.0149

18. Zheng X., Goto T., Shiraishi A., Ohashi Y. In vitro efficacy of ocular surface lubricants against dehydration. Cornea. 2013; 32 (9):1260–1264. doi: 10.1097/ICO.0b013e31829cfd44

19. Nakamura M., Mishima H., Nishida T., Otori T. Binding of hyaluronan to plasma fibronectin increases the attachment of corneal epithelial cells to a fibronectin matrix. J. Cell. Physiol. 1994; 159 (3): 415–422. doi: 10.1002/jcp.1041590305

20. Liu X., Yu F.F., Zhong Y.M., Guo X.X., Mao Z. Therapeutic effects of sodium hyaluronate on ocular surface damage induced by benzalkonium chloride preserved anti-glaucoma medications. Chin. Med. J. 2015; 128 (18): 2444–2449. doi: 10.4103/0366-6999.164927

21. Yu F., Liu X., Zhong Y., Guo X., Li M., Mao Z., Xiao H., Yang S. Sodium hyaluronate decreases ocular surface toxicity induced by benzalkonium chloride-preserved latanoprost: an in vivo study. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2013; 54 (5): 3385–3393. doi: 10.1167/iovs.12-11181

22. Nagai N., Murao T., Okamoto N., Ito Y. Comparison of corneal wound healing rates after instillation of commercially available latanoprost and travoprost in rat debrided corneal epithelium. J. Oleo Sci. 2010; 59 (3): 135–141. doi: 10.5650/jos.59.135

23. Lin Z., Liu X., Zhou T., Wang Y., Bai L., He H., Liu Z. A mouse dry eye model induced by topical administration of benzalkonium chloride. Mol. Vis. 2011; 17: 257–264.

24. Breu W. Hyaluronidase. Wien. Med. Wochenschr. 1952; 102 (23): 435–437.

25. Atkinson W.S. Use of hyaluronidase with local anesthesia in ophthalmology; preliminary report. Arch. Ophthal. 1949; 42 (5): 628–633. doi: 10.1001/archopht.1949.00900050638012

26. Harb G., Lebel F., Battikha J., Thackara J.W. Safety and pharmacokinetics of subcutaneous ceftriaxone administered with or without recombinant human hyaluronidase (rHuPH20) versus intravenous ceftriaxone administration in adult volunteers. Curr. Med. Res. Opin. 2010; 26 (2): 279–288. doi: 10.1185/03007990903432900

27. Дубницкая Л.В., Назаренко Т.А. Хронический эндометрит: возможности диагностики и лечения. Consil. med. 2007; 9 (6): 25–28.

28. Петрович Е.А., Колесов А.А., Манухин И.Б. Безопасность и эффективность препарата Лонгидазы 3000 МЕ при лечении больных, страдающих спаечным процессом в малом тазе. Иммунология. 2006; 2: 124–126.

29. Кулаков В.И., Овсянникова Т.В. Значение лапароскопии в клинике бесплодия: структура и частота патологии, эффективность лечения. Пробл. репродукции. 1996; (2): 35–37.

30. Иванова А.С., Юрьева Э.А., Длин В.В. Фиброзирующие процессы. Патофизиология соединительной ткани. Методы диагностики и принципы коррекции фиброза: Диагностический справочник. М.: Оверлей, 2008. 196 c.

31. Gilson R.L., Gondal Z.A. Hyaluronidase. StatPearls [Internet]. Treasure Island: StatPearls Publishing; 2020.

32. Лазаренко В.А., Локтионов А.Л., Азарова Ю.Е., Синякова О.А., Конопля А.И. Коррекция лонгидазой цитокинсинтетической активности перитонеальных макрофагов при остром панкреатите различной этиологии. Курск. науч.-практ. вестн. «Человек и его здоровье». 2010; (4): 34–39.

33. Теодорович О.В., Шатохин М.Н., Мальцев В.Н., Конопля А.И., Локтионов А.Л., Краснов А.В.. Коррекция иммунометаболических нарушений при аденоме предстательной железы в сочетании с хроническим простатитом. Урология. 2010; (5): 22–26.

34. Johnsson C., Tufveson G., Hällgren R. Monito­ring of intragraft pressure of rejecting organs: increased tissue pressure can be reduced by hyaluronidase the­rapy. Transplantation. 2000; 70 (11): 157515–157580. doi: 10.1097/00007890-200012150-00007

35. Yotsumoto G., Moriyama Y., Yamaoka A., Taira A. Experimental study of cardiac lymph dynamics and edema formation in ischemia/reperfusion injury – With reference to the effect of hyaluronidase. Angiology. 1998; 49 (4): 299–305. doi: 10.1177/000331979804900408

36. Rowley S.A., Hale J.E., Finlay R.D. Sub-Tenon’s local anaesthesia: the effect of hyaluronidase. Br. J. Ophthalmol. 2000; 84 (4): 435–436. doi: 10.1136/bjo.84.4.435

37. Шмырева В.Ф., Иванова А.С., Федоров А.А., Петров С.Ю., Макарова А.С. Медико-биологическое исследование лонгидазы. Ч. 1. Глаукома. 2011; (4): 5–10.

38. Zahavi A., Grigg J.R. Hyaluronidase injection for improved tissue dissection in Baerveldt tube surgery. Eur. J. Ophthalmol. 2018; 28 (3): 339–340. doi: 10.5301/ejo.5001065

39. Zhi-Liang W., Wo-Dong S., Min L., Xiao-Ping B., Jin J. Pharmacologic vitreolysis with plasmin and hyaluronidase in diabetic rats. Retina. 2009; 29 (2): 269–274. doi: 10.1097/IAE.0b013e3181923ff0

40. Kang S.W., Hyung S.M., Choi M.Y., Lee J. Induction of vitreolysis and vitreous detachment with hyaluronidase and perfluoropropane gas. Korean J. Ophthalmol. 1995; 9 (2): 69–78. doi: 10.3341/kjo.1995.9.2.69

41. Puchalska-Niedbał L., Millo B. Efficacy of hyaluronidaze in reducing vitreous opacites-preliminary report. Klin. Oczna. 2002; 104 (2): 135–137. [In Polish].

42. Torricelli A.A., Singh V., Santhiago M.R., Wilson S.E. The corneal epithelial basement membrane: structure, function, and disease. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2013; 54 (9): 6390–6400. doi: 10.1167/iovs.13-12547

43. Vesaluoma M., Teppo A.M., Grönhagen-Riska C., Tervo T. Release of TGF-beta 1 and VEGF in tears following photorefractive keratectomy. Curr. Eye Res. 1997; 16 (1): 19–25. doi: 10.1076/ceyr.16.1.19.5119

44. Finnson K.W., McLean S., di Guglielmo G.M., Philip A. Dynamics of transforming growth factor beta signaling in wound healing and scarring. Adv. Wound Care (New Rochelle). 2013; 2 (5): 195–214. doi: 10.1089/wound.2013.0429

45. Penn J.W., Grobbelaar A.O., Rolfe K.J. The role of the TGF-beta family in wound healing, burns and scarring: a review. Int. J. Burns Trauma. 2012; 2 (1): 18–28.

46. Karamichos D., Hutcheon A.E., Zieske J.D. Reversal of fibrosis by TGF-beta3 in a 3D in vitro model. Exp. Eye Res. 2014; 124: 31–36. doi: 10.1016/j.exer.2014.04.020

47. Munger J.S., Sheppard D. Cross talk among TGF-beta signaling pathways, integrins, and the extracellular matrix. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 2011; 3 (11): a005017. doi: 10.1101/cshperspect.a005017

48. Matsuba M., Hutcheon A.E., Zieske J.D. Loca­lization of thrombospondin-1 and myofibroblasts du­ring corneal wound repair. Exp. Eye Res. 2011; 93 (4): 534–540. doi: 10.1016/j.exer.2011.06.018

49. Chang Y., Wu X.-Y. The Role of c-jun n-terminal kinases 1/2 in transforming growth factor beta(1)-induced expression of connective tissue growth factor and scar formation in the cornea. J. Int. Med. Res. 2009; 37 (3): 727–736. doi: 10.1177/147323000903700316

50. Moses H.L., Tucker R.F., Leof E.B., Coffey R.J., Halper J., Shipley G.D. Type β-transforming growth factor is a growth stimulator and a growth inhibitor. In: Cancer cells: growth factors and transformation. Eds. J. Feramisco, B. Ozanne, C. Stiles. N.Y.: Cold Spring Harbor Press, 1985. 65–71.

51. Holley R.W., Bohlen P., Fava R., Baldwin J.H., Kleeman G., Armour R. Purification of kidney epithelial cell growth inhibitors. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1980; 77 (10): 5989–5992. doi: 10.1073/pnas.77.10.5989

52. Roberts A.B. Molecular and cell biology of TGF-beta. Miner Electrolyte Metab. 1998; 24 (2-3): 111–119. doi: 10.1159/000057358

53. Laiho M., Saksela O., Keski-Oja J. Transfor­ming growth factor-beta induction of type-1 plasminogen activator inhibitor. pericellular deposition and sensitivity to exogenous urokinase. Biol. Chem. 1987; 262 (36): 17467–17474.

54. Liu W., Wang D.R., Cao Y.L. TGF-beta: a fib­rotic factor in wound scarring and a potential target for anti-scarring gene therapy. Curr. Gene Ther. 2004; 4 (1): 123–136. doi: 10.2174/1566523044578004

55. Chang N.S. Hyaluronidase enhancement of TNF-mediated cell death is reversed by TGF-beta 1. Am. J. Physiol. 1997; 273 (6): 1987–1994. doi: 10.1152/ajpcell.1997.273.6.C1987

56. Chang N.S. Transforming growth factor-β1 blocks the enhancement of tumor necrosis factor cytotoxicity by hyaluronidase Hyal-2 in L929 fibroblasts. BMC Cell Biol. 2002; 3: 8. doi: 10.1186/1471-2121-3-8

57. Jester J.V., Huang J., Petroll W.M., Cavanagh H.D. TGFbeta induced myofibroblast differentiation of rabbit keratocytes requires synergistic TGFbeta, PDGF and integrin signaling. Exp. Eye Res. 2002; 75 (6): 645–657. doi: 10.1006/exer.2002.2066

58. Kaur H., Chaurasia S.S., de Medeiros F.W., Agrawal V., Salomao M.Q., Singh N., Ambati B.K., Wilson S.E. Corneal stroma PDGF blockade and myofibroblast development. Exp. Eye Res. 2009; 88 (5): 960–965. doi: 10.1016/j.exer.2008.12.006

59. Stramer B.M., Fini M.E. Uncoupling kerato­cyte loss of corneal crystallin from markers of fibrotic repair. Invest. Ophthalmol Vis Sci. 2004; 45 (11): 4010–4015. doi: 10.1167/iovs.03-1057

60. Stepp M.A., Zieske J.D., Trinkaus-Randall V., Kyne B.M., Pal-Ghosh S., Tadvalkar G., Pajoohesh-Ganji A. Wounding the cornea to learn how it heals. Exp. Eye Res. 2014; 121: 178–193. doi: 10.1016/j.exer.2014.02.007

61. Wilson S.E. Corneal myofibroblast biology and pathobiology: generation, persistence, and transparency. Exp. Eye Res. 2012; 99 (1): 78–88. doi: 10.1016/j.exer.2012.03.018

62. Jester J.V., Moller-Pedersen T., Huang J., Sax C.M., Kays W.T., Cavangh H.D., Petroll W.M., Piatigorsky J. The cellular basis of corneal transparency: evidence for ‘corneal crystallins’. J. Cell Sci. 1999; 112 (5): 613–622.

63. Torricelli A.A., Singh V., Agrawal V., Santhiago M.R., Wilson S.E. Transmission electron microscopy analysis of epithelial basement membrane repair in rabbit corneas with haze. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2013; 54 (6): 4026–4033. doi: 10.1167/iovs.13-12106

64. Medeiros C.S., Marino G.K., Santhiago M.R., Wilson S.E. The corneal basement membranes and stromal fibrosis. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2018; 59 (10): 4044–4053. doi: 10.1167/iovs.18-24428

65. Wilson S.E., Marino G.K., Torricelli A.A.M., Medeiros C.S. Injury and defective regeneration of the epithelial basement membrane in corneal fibrosis: a paradigm for fibrosis in other organs? Matrix Biol. 2017; 64: 17–26. doi: 10.1016/j.matbio.2017.06.003

66. Dinarello C.A. Interleukin-1. Cytokine Growth Factor Rev. 1997; 8 (4): 253–265. doi: 10.1016/s1359-6101(97)00023-3

67. Weng J., Mohan R.R., Li Q., Wilson S.E. IL-1 upregulates keratinocyte growth factor and hepatocyte growth factor mRNA and protein production by cultured stromal fibroblast cells: interleukin-1 beta expression in the cornea. Cornea. 1997; 16 (4): 465–471.

68. Mohan R.R., Liang Q., Kim W.J., Helena M.C., Baerveldt F., Wilson S.E. Apoptosis in the cornea: further characterization of Fas/Fas ligand system. Exp. Eye Res. 1997; 65 (4): 575–589. doi: 10.1006/exer.1997.0371

69. Егоров В.В., Смолякова Г.Л., Гохуа Т.И., Борисова Т.В. Клиническая оценка новой физио­терапевтической технологии в комплексном лече­нии бактериального воспаления роговицы. Практ. медицина. 2017; 2: 72–77.


Для цитирования:


Забанова В.Е., Фурсова А.Ж., Мадонов П.Г. Фармакологические свойства гиалуронидазы и возможности ее клинического применения в офтальмологии. Сибирский научный медицинский журнал. 2020;40(4):11-19. https://doi.org/10.15372/SSMJ20200402

For citation:


Zabanova V.E., Fursova A.Z., Madonov P.G. Hyaluronidase pharmacological properties and clinical application in ophthalmology. Siberian Scientific Medical Journal. 2020;40(4):11-19. (In Russ.) https://doi.org/10.15372/SSMJ20200402

Просмотров: 150


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2410-2512 (Print)
ISSN 2410-2520 (Online)