Потенциальные биохимические маркеры хронического бронхита и бронхиальной астмы. Современное состояние проблемы
https://doi.org/10.15372/SSMJ20190601
Аннотация
В литературном обзоре по данным публикаций последних лет систематизируются современные представления о новых биохимических маркерах бронхолегочной патологии, а именно хронической обструктивной болезни легких, хронического бронхита и бронхиальной астмы. Представлена информация о потенциальных биохимических маркерах, ассоциированных с патологией бронхолегочной системы: легочный хемокин, регулируемый активацией (хемокиновый лиганд CCL20), сурфактантные белки А и D, пентраксин-3, дефензины, альфа-1-антитрипсин, белок клеток Клара, интерлейкин-19, резистинподобные молекулы. Для каждой био молекулы описаны ее характеристика, биологические свойства и эффекты, а также результаты экспериментальных и клинических исследований применения при бронхолегочной патологии, ассоциации повышенного уровня в крови с клиническими проявлениями заболеваний. Сделан вывод, что на сегодняшний день существует немалое количество новых потенциальных биомаркеров заболеваний дыхательной системы для ранней и эффективной диагностики, профилактики и терапии заболеваний, однако эффекты некоторых из них либо недостаточно изучены, либо противоречивы и требуют дальнейших исследований, которые активно продолжаются в настоящее время в мире и в России.
Ключевые слова
Об авторах
Е. А. КуртуковРоссия
Евгений Алексеевич Куртуков
630089, Новосибирск, ул. Бориса Богаткова, 175/1
Ю. И. Рагино
Россия
Юлия Игоревна Рагино - доктор медицинских наук, профессор, член-корр. РАН.
630089, Новосибирск, ул. Бориса Богаткова, 175/1
Список литературы
1. Боркина А.Н. Роль клеток Клара в гистофизиологии бронхиального эпителия и их значение в развитии легочной патологии. Пульмонология. 2007; (5): 94-99.
2. Дефицит альфа-1-антитрипсина у взрослых. Рекомендации Российского респираторного общества. Министерство здравоохранения РФ, 2017.
3. Дидковский Н.А., Жарова М.А. Значение наследственных факторов в развитии эмфиземы легких. Терапевт. арх. 2006; (3): 70-74.
4. Жигальцова-Кучинская О.А., Сивицкая Л.Н., Даниленко Н.Г., Жигальцов А.М., Нагорнов И.В., Метельский С.М. Дефицит альфа-1-антитрипсина: генетические основы, эпидемиология, значение в развитии бронхолегочной патологии. Вестн. ВГМУ. 2015; 14 (6): 39-52.
5. Ковалькова Н.А., Рагино Ю.И., Логвиненко Н.И., Мерекина Е.В., Воевода М.И., Значение сурфактантных белков в диагностике терапевтических заболеваний Терапевт. арх. 2015; 87 (1): 115119. doi: 10.17116/terarkh2015871115-119
6. Лямина С.В., Веденикин Т.Ю., Малышев И.Ю. Современный подход к анализу иммунного ответа при заболеваниях легких: сурфактантный белок D и его роль. Соврем. пробл. науки и образования. 2011; (4): 1-2.
7. Микеров А.Н. Роль сурфактантного белка А в иммунной защите легких. Фундам. исслед. 2012; (2): 204-207.
8. Назаров П.Г. Пентраксины в реакциях врожденного и приобретенного иммунитета, организации матрикса, фертильности. Мед. акад. журн. 2010; (4): 107-124.
9. Соловьева О.Г. Дефицит а1-антитрипсина в практике пульмонолога. Пульмонология. 2015; 25 (4): 505-508. doi: 10.18093/086901892015254505508
10. Azzurri A., Sow O.Y., Amedei A., Bah B., Di-allo S., Peri G., Benagiano M., D’Elios M.M., Man-tovani A., Del Prete G. IFN-gamma-inducible protein 10 and pentraxin 3 plasma levels are tools for monitoring inflammation and disease activity in Mycobacterium tuberculosis infection. Microbes Infect. 2005; 7 (1): 1-8. doi: 10.1016/j.micinf.2004.09.004
11. Bellinghausen I., Reuter S., Martin H., Maxein-er J., Luxemburger U., Tureci O., Grabbe S., Taube C., Saloga J. Enhanced production of CCL18 by tolerogenic dendritic cells is associated with inhibition of allergic airway reactivity. J. Allergy Clin. Immunol. 2012; 130 (6): 1384-1393. doi: 10.1016/jjaci.2012.08.039
12. Bozza S., Bistoni F., Gaziano R., Pitzurra L., Zelante T., Bonifazi P., Perruccio K., Bellocchio S., Neri M., Iorio A.M., Salvatori G., de Santis R., Calvit-ti M., Doni A., Garlanda C., Mantovani A., Romani L. Pentraxin 3 protects from MCMV infection and reactivation through TLR sensing pathways leading to IRF3 activation. Blood. 2006; 108 (10): 3387-3396. doi: 10.1182/blood-2006-03-009266
13. Braido F., Riccio A.M., Guerra L., Gamalero C., Zolezzi A., Tarantini F., de Giovanni B., Folli C., Des-calzi D., Canonica G.W. Clara cell 16 protein in COPD sputum: a marker of small airways damage? Respir. Med. 2007; 101 (10): 2119-2124. doi: 10.1016/j.rmed.2007.05.023
14. Breviario F., d’Aniello E.M., Golay J., Peri G., Bottazzi B., Bairoch A., Saccone S., Marzella R., Pre-dazzi V, Rocchi M. et al. Interleukin-1-inducible genes in endothelial cells. Cloning of a new gene related to C-reactive protein and serum amyloid P component. J. Biol. Chem. 1992; 267 (31): 22190-22197.
15. Brinker K.G., Gamer H., Wright J.R. Surfactant protein A modulates the differentiation of murine bone marrow-derived dendritic cells. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 2003; 284: L232-L241.
16. Broeckaert F., Bernard A. Clara cell secretory protein (CC16): characteristics and perspectives as lung peripheral biomarker. Clin. Exp. Allergy. 2000; 30 (4): 469-475. doi: 10.1046/j.1365-2222.2000.00760.x
17. Caramori G., Adcock I.M., di Stefano A., Chung K.F. Cytokine inhibition in the treatment of COPD. Int. J. Chron. Obstruct. Pulmon Dis. 2014; 9: 397-412. doi: 10.2147/COPD.S42544
18. Chen H., Wang Y, Bai C., Wang X. Alterations of plasma inflammatory biomarkers in the healthy and chronic obstructive pulmonary disease patients with or without acute exacerbation. J. Proteomics. 2012; 75: 2835-2843. doi: 10.1016/jjprot.2012.01.027
19. Chenivesse C., Chang Y., Azzaoui I., Ait Yahia S., Morales O., Ple C., Foussat A., Tonnel A.B., Delhem N., Yssel H., Vorng H., Wallaert B., Tsico-poulos A. Pulmonary CCL18 recruits human regulatory T cells. J Immunol. 2012; 189 (1): 128-137. doi: 10.4049/jimmunol.1003616
20. De Nadai' P., Charbonnier A.S., Chenivesse C., Senechal S., Fournier C., Gilet J., Vorng H., Chang Y., Gosset P., Wallaert B., Tonnel A.B., Lassalle P., Tsico-poulos A. Involvement of CCL18 in allergic asthma. J. Immunol. 2006; 176 (10): 6286-6293. doi: 10.4049/jimmunol.176.10.6286
21. Dilek F., Emin O., Gtiltepe B., Yazici M., Ca-kir E., Gedik A.H. Evaluation of nasal fluid P-defensin 2 levels in children with allergic rhinitis. Turk. Pediatri. Ars. 2017; 52 (2): 79-84. doi: 10.5152/TurkPediatri-Ars.2017.4497
22. Eden E., Strange C., Holladay B., Xie L. Asthma and allergy in alpha-1 antitrypsin deficiency. Respir. Med. 2006; 100 (8): 1384-1391. doi: 10.1016/j.rmed.2005.11.017
23. Emmanouil P., Loukides S., Kostikas K., Pa-patheodorou G., Papaporfyriou A., Hillas G., Vamva-karis I., Triggidou R., Katafigiotis P., Kokkini A., Pa-piris S., Koulouris N., Bakakos P. Sputum and BAL Clara cell secretory protein and surfactant protein D levels in asthma. Allergy. 2015; 70 (6): 711-714. doi: 10.1111/all.12603
24. Ermers M.J., Janssen R., Onland-Moret N.C., Hodemaekers H.M., Rovers M.M., Houben M.L., Kimpen J.L., Bont L.J. IL10 family member genes IL19 and IL20 are associated with recurrent wheeze after respiratory syncytial virus bronchiolitis. Pediatr. Res. 2011; 70 (5): 518-523. doi: 10.1203/PDR.0b013e31822f5863
25. Faiz A., Weckmann M., Tasena H., Vermeu-len C.J., van den Berge M., Ten Hacken N.H.T., Ha-layko A.J., Ward J.P.T., Lee T.H., Tjin G., Black J.L., Haghi M., Xu C.J., King G.G., Farah C.S., Oliver B.G., Heijink I.H., Burgess J.K. Profiling of healthy and asthmatic airway smooth muscle cells following interleu-kin-1beta treatment: a novel role for CCL20 in chronic mucus hypersecretion. Eur. Respir. J. 2018; 52 (2). doi: 10.1183/13993003.00310-2018
26. Fan C., Meuchel L.W., Su Q., Angelini D.J., Zhang A., Cheadle C., Kolosova I., Makarevich O.D., Yamaji-Kegan K., Rothenberg M.E., Johns R.A. Resis-tin-like molecule a in allergen-induced pulmonary vascular remodeling. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 2015; 53 (3): 303-313. doi: 10.1165/rcmb.2014-0322OC
27. Fang C.L., Yin L.J., Sharma S., Kierstein S., Wu H.F., Eid G., Haczku A., Corrigan C.J. Resistinlike molecule-P (RELM-P) targets airways fibroblasts to effect remodelling in asthma: from mouse to man. Clin. Exp. Allergy. 2015; 45 (5): 940-952. doi 10.1111/cea.12481
28. Francis J.N., Sabroe I., Lloyd C.M., Durham S.R., Till S.J. Elevated CCR6+ CD4+ T lymphocytes in tissue compared with blood and induction of CCL20 during the asthmatic late response. Clin. Exp. Immunol. 2008; 152 (3): 440-447 doi: 10.1111/j.1365-2249.2008.03657.x
29. Guerra S., Halonen M., Vasquez M.M., Span-genberg A., Stern D.A., Morgan W.J., Wright A.L., Lavi I., Tares L., Carsin A.E., Dobano C., Barreiro E., Zock J.P., Martinez-Moratalla J., Urrutia I., Sunyer J., Keidel D., Imboden M., Probst-Hensch N., Hallberg J., Melen E., Wickman M., Bousquet J., Belgrave D.C., Simpson A., Custovic A., Anto J.M., Martinez F.D. Relation between circulating CC16 concentrations, lung function, and development of chronic obstructive pulmonary disease across the lifespan: a prospective study. Lancet Respir. Med. 2015; 3 (8): 613-620. doi: 10.1016/S2213-2600(15)00196-4
30. Guerra S., Vasquez M.M., Spangenberg A., Halonen M., Martin R.J. Club cell secretory protein in serum and bronchoalveolar lavage of patients with asthma. J. Allergy Clin. Immunol. 2016; 138 (3): 932-934. doi: 10.1016/jjaci.2016.03.047
31. Haitham S., Ashry A., Strange C. COPD in individuals with the PiMZ alpha-1 antitrypsin genotype. Eur. Respir. Rev. 2017; 26 (146). pii 170068. doi: 10.1183/16000617.0068-2017
32. Hamai K., Iwamoto H., Ishikawa N., Hori-masu Y., Masuda T., Miyamoto S., Nakashima T., Ohshimo S., Fujitaka K., Hamada H., Hattori N., Kohno N. Comparative study of circulating MMP-7, CCL18, KL-6, SP-A, and Sp-D as disease markers of idiopathic pulmonary fibrosis. Dis. Markers. 2016; 2016: 4759040. doi: 10.1155/2016/4759040
33. He X., Han B., Liu M. Long pentraxin 3 in pulmonary infection and acute lung injury. Am. J. Physiol. 2007; 292 (5): 1039-1049. doi: 10.1152/aj-plung.00490.2006
34. Kishore U., Greenhough T.J., Waters P., Shrive A.K., Mohammed R., Kamran M.F., Bernal A.L., Reid K.B., Madan T., Chakraborty T. Surfactant proteins SP-A and SP-D: structure, function and receptors.Mol. Immunol. 2006; 43 (9): 1293-1315. doi: 10.1016/j.molimm.2005.08.004
35. LeMessurier K.S., Palipane M., Tiwary M., Gavin B., Samarasinghe A.E. Chronic features of allergic asthma are enhanced in the absence of resistinlike molecule-beta. Sci. Rep. 2018; 8 (1): 7061. doi: 10.1038/s41598-018-25321-y
36. Liao S.C., Cheng Y.C., Wang Y.C., Wang C.W., Yang S.M., Yu C.K., Shieh C.C., Cheng K.C., Lee M.F., Chiang S.R., Shieh J.M., Chang M.S. IL-19 induced Th2 cytokines and was up-regulated in asthma patients. J. Immunol. 2004; 173 (11): 6712-6718. doi: 10.4049/jimmunol.173.11.6712
37. Mackay R.M., Grainge C.L., Lau L.C., Barber C., Clark H.W., Howarth P.H. Airway surfactant protein D deficiency in adults with severe asthma. Chest. 2016; 149 (5): 1165-1172. doi: 10.1016/j.chest.2015.11.012
38. Madan T., Kishore U., Singh M., Strong P., Clark H., Hussain E.M., Reid K.B.M., Sarma P.U. Surfactant proteins A and D protect mice against pulmonary hypersensitivity induced by Aspergillus fumigatus antigens and allergens. J. Clin. Invest. 2001; 107 (4): 467-475. doi: 10.1172/JCI10124
39. Mantovani A., Garlanda C., Doni A., Bottaz-zi B. Pentraxins in innate immunity: from C-reactive protein to the long pentraxin PTX3. J. Clin. Immunol. 2008; 28 (1): 1-13. doi: 10.1007/s10875-007-9126-77
40. Mattar E.H., Almehdar H.A., Yacoub H.A., Uversky V.N., Redwan E.M. Antimicrobial potentials and structural disorder of human and animal defensins. Cytokine Growth Factor Rev. 2016; 28: 95-111. doi: 10.1016/j.cytogfr.2015.11.002
41. Munitz A., Cole E., Karo-Atar D., Finkel-man F.D., Rothenberg M.E. Resistin-like molecule-alpha regulates IL-13-induced chemokine production but not allergen-induced airway responses. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 2012; 46 (5): 703-713. doi: 10.1165/rcmb.2011-0391OC
42. Obeidat M., Li X., Burgess S., Zhou G., Fish-bane N., Hansel N.N., Bosse Y., Joubert P., Hao K., Nickle D.C., van den Berge M., Timens W., Cho M.H., Hobbs B.D., de Jong K., Boezen M., Hung R.J., Rafaels N., Mathias R., Ruczinski I., Beaty T.H., Barnes K.C., Pare P.D., Sin D.D. Surfactant protein D is a causal risk factor for COPD: results of Mende-lian randomisation. Eur. Respir. J. 2017; 50 (5). doi: 10.1183/13993003.00657-2017
43. Oral H.B., Kotenko S.V., Yilmaz M., Mani O., Zumkehr J., Blaser K., Akdis C.A., Akdis M. Regulation of T cells and cytokines by the interleukin-10 (IL-10)-family cytokines IL-19, IL-20, IL-22, IL-24 and IL-26. Eur. J. Immunol. 2006; 36: 380-388. doi: 10.1016/s0165-2478(03)00087-7
44. Reibman J., Hsu Y., Chen L.C., Bleck B., Gordon T. Airway epithelial cells release MIP-3a/CCL20 in response to cytokines and ambient particulate matter. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 2003; 28 (6): 648-654. doi: 10.1165/rcmb.2002-00950C
45. Proud D. The role of defensins in virus-induced asthma. Curr. Allergy Asthma Rep. 2006; 6 (1): 81-85. doi: 10.1007/s11882-006-0015-6
46. Pini L., Tiberio L., Venkatesan N., Bezzi M., Corda L., Luisetti M., Ferrarotti I., Malerba M., Lomas D.A., Janciauskiene S., Vizzardi E., Modina D., Schiaffonati L., Tantucci C. The role of bronchial epithelial cells in the pathogenesis of COPD in Z alpha 1 antitrypsin deficiency. Respir. Res. 2014; 15 (1): 112. doi: 10.1186/s12931-014-0112-3
47. Sanmiguel C.J., Olaru F., Li J., Mohr E., Jensen E. Interleukin-1 regulates keratinocyte expression of T cell targeting chemokines through interleukin-1 receptor associated kinase-1 (IRAK1) dependent and independent pathways. Cell Signal. 2009; 21 (5): 685694. doi: 10.1016/j.cellsig.2009.01.005
48. Schneider J.J., Unholzer A., Schaller M., Schafer-Korting M., Korting H.C. Human defensins. J. Mol. Med. (Berl.) 2005; 83 (8): 587-595. doi: 10.1007/s00109-005-0657-1
49. Schutyser E., Richmond A., van Damme J. Involvement of CC chemokine ligand 18 (CCL18) in normal and pathological processes. J. Leukoc. Biol. 2005; 78 (1): 14-26. doi: 10.1189/jlb.1204712
50. Sorensen GL1, Husby S., Holmskov U. Surfactant protein A and surfactant protein D variation in pulmonary disease. Immunobiology. 2007; 212 (4-5): 381-416. doi: 10.1016/j.imbio.2007.01.003
51. Steppan C.M., Brown E.J., Wright C.M., Bhat S., Banerjee R.R., Dai C.Y., Enders G.H., Sil-berg D.G., Wen X., Wu G.D., Lazar M.A. A family of tissue-specific resistin-like molecules. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001; 98 (2): 502-506. doi: 10.1073/pnas.98.2.502
52. Van Vyve T., Chanez P., Bernard A., Bous-quet J., Godard P., Lauwerijs R., Sibille Y. Protein content in bronchoalveolar lavage fluid of patients with asthma and control subjects. J. Allergy Clin. Immunol. 1995; 95 (1, Pt. 1): 60-68. doi: S0091674995000121
53. Wert S.E., Yoshida M., LeVine A.M., Ikega-mi M., Jones T., Ross G.F., Fisher J.H., Korfhagen T.R., Whitsett J.A. Increased metalloproteinase activity, oxidant production, and emphysema in surfactant protein D gene-inactivated mice. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000; 97 (11): 5972-5977. doi: 10.1073/pnas.100448997.
54. Wirestam L., Enocsson H., Skogh T., Elor-anta M.L., Ronnblom L., Sjowall C., Wettero J. Interferon-alpha coincides with suppressed levels of pen-traxin-3 (PTX3) in systemic lupus erythematosus and regulates leucocyte PTX3 in vitro. Clin. Exp. Immunol. 2017; 189 (1): 83-91. doi: 10.1111/cei.12957
55. Yoshie O., Imai T., Nomiyama H. Chemokines in immunity. Adv. Immunol. 2001; 78: 57-110.
Рецензия
Для цитирования:
Куртуков Е.А., Рагино Ю.И. Потенциальные биохимические маркеры хронического бронхита и бронхиальной астмы. Современное состояние проблемы. Сибирский научный медицинский журнал. 2019;39(6):5-13. https://doi.org/10.15372/SSMJ20190601
For citation:
Kurtukov E.A., Ragino Yu.I. Potential biochemical markers of chronic bronchitis and bronchial asthma. Current state of the problem. Сибирский научный медицинский журнал. 2019;39(6):5-13. (In Russ.) https://doi.org/10.15372/SSMJ20190601