Микроструктура связочного аппарата пятой плюсневой кости

   Энтезисы уязвимы к острым травмам при чрезмерных нагрузках, а также являются основным органом-мишенью при ряде ревматических состояний.

   Цель исследования – изучить особенности микроскопического строения энтезисов V плюсневой кости человека.

   Материал и методы. Исследованы стопы трупов 56 мужчин 21–35 лет. На микропрепаратах V плюсневой кости с ее связочным аппаратом измеряли толщину зон фиброзно-хрящевого энтезиса с описанием расположения коллагеновых волокон и подсчитывали их удельное содержание на единицу площади в зонах обызвествленного и минерализованного волокнистого хряща энтезиса с последующим сравнительным анализом полученных данных.

   Результаты и их обсуждение. Установлено, что соединения всех четырех связок и сухожилия к V плюсневой кости по своей гистологической структуре являются фиброзно-хрящевыми энтезисами с четырьмя отдельными зонами. Выявлено достоверное преобладание толщины зоны обызвествленного волокнистого хряща над толщиной зоны минерализованного волокнистого хряща энтезисов сухожилия короткой малоберцовой мышцы, плюсневой подошвенной и коллатеральной связок с параллельным расположением извитых коллагеновых волокон и единичными зрелыми хондроцитами и их изогенными группами. Максимальная толщина зоны обызвествленного волокнистого хряща отмечена для энтезиса глубокой поперечной плюсневой связки с прямым расположением коллагеновых волокон и множеством изогенных групп хондроцитов, минимальная ‒ для предплюсне-плесневой и длинной подошвенной связок с хаотично переплетенными коллагеновыми волокнами и множеством зрелых хондроцитов и их изогенных групп. Зубчатая базофильная линия энтезиса сухожилия короткой малоберцовой мышцы характеризуется наибольшими толщиной и амплитудой зубцов. Выявлено уменьшение доли коллагеновых волокон от обызвествленной до минерализованной зоны у энтезисов сухожилия короткой малоберцовой мышцы и комплекса предплюсне-плесневой и длинной подошвенных связок, увеличение доли коллагена в сторону минерализованной зоны у энтезиса глубокой поперечной плюсневой связок и одинаковая его доля у энтезисов плюсневой подошвенной и коллатеральной связок.

   Заключение. Проведенное исследование с обнаружением особенностей микроструктуры энтезисов V плюсневой кости свидетельствует о существовании возрастных, половых, а возможно, и конституциональных закономерностей их строения и предрасположенности к механической травме.

1. Apostolakos J., Durant T.J., Dwyer C.R., Russell R.P., Weinreb J.H., Alaee F., Beitzel K., McCarthy M.B., Cote M.P., Mazzocca A.D. The enthesis : a review of the tendon-to-bone insertion. Muscles Ligaments Tendons J. 2014;4(3):333–342.

2. Aydin S.Z., Deodhar A. Are all entheses the same? Rheumatology (Oxford). 2024;63(1):1–2. doi: 10.1093/rheumatology/kead288

3. Турчин Е.А., Григоровская А.В., Коструб А.А., Лябах А.А. Гистологические особенности строения плантарной пластинки капсулы плюснефалангового сустава. Травма. 2019;20(3):49–53. doi: 10.22141/1608-1706.3.20.2019.172093

4. Турчин Е.А., Григоровская А.В., Коструб А.А., Лябах А.А. Гистологические изменения энтезиса подошвенного апоневроза при подошвенном фасциите. Травма. 2019;20(5):41–45. doi: 10.22141/1608-1706.5.20.2019.185554

5. Benjamin M., Kaiser E., Milz S. Structure-function relationships in tendons : a review. J. Anat. 2008;212(3):211-228. doi: 10.1111/j.1469-7580.2008.00864.x

6. Benjamin М., McGonagle D. Entheses: tendon and ligament attachment sites. Scand. J. Med. Sci. Sports. 2009;19(4):520–527. doi: 10.1111/j.1600-0838.2009.00906.x

7. Nery С., Umans H., Baumfeld D. Etiology, clinical assessment, and surgical repair of plantar plate tears. Semin. Musculoskelet. Radiol. 2016;20(2):204–212. doi: 10.1055/s-0036-1581114

8. Becker S.K. Osteoarthritis, entheses, and long bone cross-sectional geometry in the Andes: Usage, history, and future directions. Int. J. Paleopathol. 2020;29:45–53. doi: 10.1016/j.ijpp.2019.08.005

9. Bryceland J.K., Powell A.J., Nunn T. Knee menisci. Cartilage. 2017;8(2):99–104. doi: 10.1177/1947603516654945

10. Coronel L., Mandl P., Miguel-Pérez M., Blasi J., D’Agostino M.A., Martinoli C., Bong D.A., Möller I. Characterization of digital annular pulleys and their entheses: an ultrasonographic study with anatomical and histological correlations. Rheumatology (Oxford). 2024;63(11):3050–3055. doi: 10.1093/rheumatology/kead614

11. Coughlin M.J., Baumfeld D.S., Nery C. Second MTP joint instability: grading of the deformity and description of surgical repair of capsular insufficiency. Phys. Sportsmed. 2011;39(3):132–141. doi: 10.3810/psm.2011.09.1929

12. Deland J.T., Lee K.T., Sobel M., DiCarlo E.F. Anatomy of the plantar plate and its attachments in the lesser metatarsal phalangeal joint. Foot Ankle Int. 1995;16(8):480–486. doi: 10.1177/107110079501600804

13. Doty J.F., Coughlin M.J. Metatarsophalangeal joint instability of the lesser toes and plantar plate deficiency. J. Am. Acad. Orthop. Surg. 2014;22(4):235–245. doi: 10.5435/JAAOS-22-04-235

14. Finney F.T., McPheters A., Singer N.V., Scott J.C., Jepsen K.J., Holmes J.R., Talusan P.G. Microvasculature of the plantar plate using nano-computed tomography. Foot Ankle Int. 2019;40(4):457–464. doi: 10.1177/1071100718816292

15. Johnston 3rd R.B., Smith J., Daniels T. The plantar plate of the lesser toes: An anatomical study in human cadavers. Foot Ankle Int. 1994;15(5):276–282. doi: 10.1177/107110079401500508

16. Maas N.M.G., Grinten M., Bramer W.M., Kleinrensink G.-J. Metatarsophalangeal joint stability : a systematic review on the plantar plate of the lesser toes. J. Foot Ankle Res. 2016;9:32. doi: 10.1186/s13047-016-0165-2

17. Umans H., Srinivasan R., Elsinger E., Wilde G.E. MRI of lesser metatarsophalangeal joint plantar plate tears and associated adjacent interspace lesions. Skeletal Radiol. 2014;43(10):1361–1368. doi: 10.1007/s00256-014-1920-8

18. Баврина А.П. Современные правила использования методов описательной статистики в медико-биологических исследованиях. Мед. альм. 2020;63(2):95–105.

19. Bloebaum R.D., Kopp D.V. Remodeling capacity of calcified fibrocartilage of the hip. Anat. Rec. A. Discov. Mol. Cell. Evol. Biol. 2004;279(2):736–739. doi: 10.1002/ar.a.20066

20. Shea J.E., Hallows R.K., Bloebaum R.D. Experimental confirmation of the sheep model for studying the role of calcified fibrocartilage in hip fractures and tendon attachments. Anat. Rec. 2002;266(3):177–183. doi: 10.1002/ar.10051

21. Benjamin M., Toumi H., Suzuki D., Redman S., Emery P., McGonagle D. Microdamage and altered vascularity at the enthesis-bone interface provides an anatomic explanation for bone involvement in the HLA-B27-associated spondylarthritides and allied disorders. Arthritis Rheum. 2007;56(1):224–233. doi: 10.1002/art.22290