Влияние потребления алкоголя на уровень белков сурфактанта SP-A и SP-D в крови у мужчин и женщин г. Новосибирска

Цель исследования – определить влияние потребления алкоголя на уровень белков сурфактанта SP-A и SP-D у мужчин и женщин г. Новосибирска. Материал и методы. Обследовано 174 человека (87 мужчин и 87 женщин) в возрасте от 45 до 69 лет, отобранных случайным образом из жителей г. Новосибирска. Потребление алкоголя оценивали с применением опросника AUDIT. Содержание белков сурфактанта SP-A и SP-D в сыворотке крови определяли методом иммуноферментного анализа. При статистическом анализе применяли параметрические и непараметрические методы описательной статистики, корреляционный анализ проводили с использованием критерия Спирмена, многофакторный анализ – с помощью бинарной логистической регрессии. Для оценки диагностической значимости переменных с определением чувствительности и специфичности применяли ROC- анализ. Во всех процедурах статистического анализа критический уровень значимости нулевой статистической гипотезы (р) принимался равным 0,05. Результаты. В общей выборке мужчин и женщин в возрасте 45–69 лет определено, что обычная разовая доза потребляемого алкоголя (ОРДПА), равная 7–9 алкогольных единиц, обратно ассоциирована с содержанием SP-A (r = –0,154, p = 0,043). С помощью ROC-анализа установлено, что SP-A является маркером (площадь под ROC-кривой 71,2 %) приема алкоголя в ОРДПА, равной 7–9 алкогольных единиц, при содержании SP-A не более 921 пг/мл его чувствительность в отношении определения потребления алкоголя в ОРДПА, равной 7–9 алкогольных единиц, составляет 68,7 %, специфичность – 87,5 %. Регрессионный анализ показал, что переменная «ОРДПА, равная 7–9 алкогольных единиц», прямо влияет на наличие SP-A в концентрации не более 921 пг/мл (Exp (B) = 13,0; 95 % CI = 1,5; 111,0, p = 0,019) независимо от возраста и пола. В общей выборке мужчин и женщин г. Новосибирска в возрасте 45–69 лет, а также у мужчин выявлены обратные ассоциации содержания Sp-D с наличием > 0 баллов в ответе на вопрос теста AUDIT «Как часто за последний год из-за употребления алкоголя вы не делали чего-то, чего от вас ожидали?». Определено, что у женщин уровень SP-A в крови выше, чем у мужчин. Возможно, это связано с тем, что женщины реже, чем мужчины, курили (соответственно 10,3 и 23,0 %, p = 0,020). Таким образом, установлено, что у мужчин и женщин г. Новосибирска в возрасте 45–69 лет высокая ОРДПА является независимым фактором, прямо влияющим на наличие уровня SP-A в крови, не превышающего 921 пг/мл.

1. Kaphalia L., Calhoun W.J. Alcoholic lung injury: metabolic, biochemical and immunological aspects. Toxicology Lett. 2013;222(2):171–179. doi: 10.1016/j.toxlet.2013.07.016

2. Downs C.A., Trac D., Brewer E.M., Brown L.A., Helms M.N. Chronic alcohol ingestion changes the landscape of the alveolar epithelium. Biomed. Res. Int. 2013;2013:470217. doi: 10.1155/2013/470217

3. Deng W., He J., Tang X.M., Li C.Y., Tong J., Qi D., Wang D.X. Alcohol inhibits alveolar fluid clearance through the epithelial sodium channel via the A2 adenosine receptor in acute lung injury. Mol. Med. Rep. 2021;24(4):725. doi: 10.3892/mmr.2021.12364

4. Харламова О.С., Николаев К.Ю., Рагино Ю.И., Воевода М.И. Влияние курения на уровни сурфактантных белков SP-A и SP-D в крови у пациентов без бронхолегочных заболеваний. Бюл. сиб. мед. 2020;19(2):104–111. doi: 10.20538/16820363-2020-2-104–111

5. Bridges J.P., Davis H.W., Damodarasamy M., Kuroki Y., Howles G., Hui D.Y., McCormack F.X. Pulmonary surfactant proteins A and D are potent endogenous inhibitors of lipid peroxidation and oxidative cellular injury. J. Biol. Chem. 2000;275(49):38848–38855. doi: 10.1074/jbc.M005322200

6. Lazic T., Wyatt T.A., Matic M., Meyerholz D.K., Grubor B., Gallup J.M., Kersting K.W., Imerman P.M., Almeida-De-Macedo M., Ackermann M.R. Maternal alcohol ingestion reduces surfactant protein A expression by preterm fetal lung epithelia. Alcohol. 2007;41(5):347–355. doi: 10.1016/j.alcohol.2007.07.006

7. Clay S.W. Comparison of AUDIT and CAGE questionnaires in screening for alcohol use disorders in elderly primary care outpatients. J. Am. Osteopath. Assoc. 1997;97(10):588–592. doi: 10.7556/jaoa.1997.97.10.588

8. Liu Z., Chen S., Xu Y., Liu X., Xiong P., Fu Y. Surfactant protein A expression and distribution in human lung samples from smokers with or without chronic obstructive pulmonary disease in China. Medicine (Baltimore). 2020;99(7):e19118. doi: 10.1097/MD.0000000000019118

9. Yeligar S.M., Chen M.M., Kovacs E.J., Sisson J.H., Burnham E.L., Brown L.A. Alcohol and lung injury and immunity. Alcohol. 2016;55:51–59. doi: 10.1016/j.alcohol.2016.08.005

10. Price M.E., Case A.J., Pavlik J.A., deVasure J.M., Wyatt T.A., Zimmerman M.C., Sisson J.H. S-nitrosation of protein phosphatase 1 mediates alcoholinduced ciliary dysfunction. Sci. Rep. 2018;8(1):9701. doi: 10.1038/s41598-018-27924-x

11. Yeligar S.M., Harris F.L., Brown L.A.S., Hart C.M. Pharmacological reversal of post-transcriptional alterations implicated in alcohol-induced alveolar macrophage dysfunction. Alcohol. 2023;106:30–43. doi: 10.1016/j.alcohol.2022.10.003

12. Malherbe D.C., Messaoudi I. Transcriptional and epigenetic regulation of monocyte and macrophage dysfunction by chronic alcohol consumption. Front. Immunol. 2022;13:911951. doi: 10.3389/fimmu.2022.911951

13. Nissen C.G., Mosley D.D., Kharbanda K.K., Katafiasz D.M., Bailey K.L., Wyatt T.A. Malondi aldehyde acetaldehyde-adduction changes surfactant protein D structure and function. Front. Immunol. 2022;13:866795. doi: 10.3389/fimmu.2022.866795

14. Muralidharan A., Bauer C., Katafiasz D.M., Pham D., Oyewole O.O., Morwitzer M.J., Roy E., Bailey K.L., Reid S.P., Wyatt T.A. Malondialdehyde acetaldehyde adduction of surfactant protein D attenuates SARS-CoV-2 spike protein binding and virus neutralization. Alcohol Clin. Exp. Res. 2023;47(1):95–103. doi: 10.1111/acer.14974

15. Liangpunsakul S., Bennett R., Westerhold C., Ross R.A., Crabb D.W., Lai X., Witzmann F.A. Increasing serum pre-adipocyte factor-1 (Pref-1) correlates with decreased body fat, increased free fatty acids, and level of recent alcohol consumption in excessive alcohol drinkers. Alcohol. 2014;48(8):795–800. doi: 10.1016/j.alcohol.2014.07.013

16. Jawed S., Mannan N., Qureshi M.A. Association of surfactant protein-D with obesity. J. Ayub. Med. Coll. Abbottabad. 2016;28(3):489–492.

17. Kuzmenko A.I., Wu H., Wan S., McCormack F.X. Surfactant protein A is a principal and oxidation-sensitive microbial permeabilizing factor in the alveolar lining fluid. J. Biol. Chem. 2005;280(27):25913–25919. doi: 10.1074/jbc.M411344200

18. Joshi P.C., Guidot D.M. The alcoholic lung: epidemiology, pathophysiology, and potential therapies. Am. J. Physiol. Lung. Cell. Mol. Physiol. 2007;292(4):813– 823. doi: 10.1152/ajplung.00348.2006

19. Neuman M.G., Maor Y., Nanau R.M., Melzer E., Mell H., Opris M., Cohen L., Malnick S. Alcoholic liver disease: role of cytokines. Biomolecules. 2015;5(3):2023–2034. doi: 10.3390/biom5032023

20. Kolomaznik M., Nova Z., Calkovska A. Pulmonary surfactant and bacterial lipopolysaccharide: the interaction and its functional consequences. Physiol. Res. 2017;66(Suppl. 2):147–157. doi: 10.33549/physiolres.933672

21. King S.D., Chen S.Y. Recent progress on surfactant protein A: cellular function in lung and kidney disease development. Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 2020;319(2):316–320. doi: 10.1152/ajpcell.00195.2020