ОСОБЕННОСТИ МИКРОЭЛЕМЕНТНОГО СОСТАВА ПЕЧЕНИ И СТРУКТУРЫ МЕЗЕНТЕРИАЛЬНОГО ЛИМФАТИЧЕСКОГО УЗЛА У КРЫС ПОДРОСТКОВОГО ВОЗРАСТА В УСЛОВИЯХ ХРОНИЧЕСКОЙ ИНТОКСИКАЦИИ СВИНЦОМ

Цель исследования - выявить структурные перестройки мезентериального лимфатического узла подростков самцов крыс с учетом изменений в минеральном обмене на фоне хронической интоксикации ацетатом свинца. Материал и методы. Эксперимент проведен на 4-недельных самцах крыс Wistar подросткового возраста (10 крыс), получавших per os раствор ацетата свинца в суточной дозе 10 мг/кг массы тела в течение 21 суток, животные контрольной группы (10 крыс) получали корм без тяжелого металла. Исследовали мезентериальный лимфатический узел, печень (окраска гематоксилином и эозином, азуром II и эозином) с помощью световой микроскопии и морфометрии; содержание биоэлементов в печени определяли с помощью атомной эмиссионной спектрометрии с индукционно-связанной аргоновой плазмой. При статистической обработке результатов исследования применяли непараметрический U -критерий Манна - Уитни, критерий Пирсона χ². Результаты и их обсуждение. Лимфатический узел перестраивается из промежуточного (в контроле) во фрагментированный функциональный тип, способствующий активному току лимфы через синусную систему лимфоидного органа. Снижается доля Т-зависимых функциональных зон лимфоузла. В 100 % наблюдений выявлено повышение концентрации свинца в тканях печени. В 60 % образцов печени обнаружено снижение содержания калия и цинка. В 40 % случаев произошло нарушение обмена марганца, в 20 % регистрируются отклонения в количестве кальция, йода, фосфора и кремния. Таким образом, хроническое воздействие подострых доз ацетата свинца на организм подростков самцов крыс приводит к выраженным сдвигам в обмене биоэлементов. На фоне измененных биохимических процессов формируются структурно-функциональные перестройки в мезентериальном лимфатическом узле: депрессия иммунной обработки лимфы, активизация транспортной функции органа.

мезентериальный лимфатический узел, ацетат свинца, печень, микроэлементы, интоксикация

1. Авцын А.П., Жаворонков А.А., Риш М.А., Строчкова Л.С. Микроэлементозы человека. М.: Медицина, 1991. 496 с.

2. Гелашвили О.А. Вариант периодизации биологически сходных стадий онтогенеза человека и крысы // Сарат. науч.-мед. журн. 2008. 22. (4). 125-126.

3. Залавина С.В., Асташов В.В., Елясин П.А., Греф В.В. Цитоархитектоника лимфатических узлов беременных самок-крыс Wistar в условиях хронического поступления свинца // Вестн. КРСУ. 2017. 17. (3). 169-172.

4. Коненков В.И., Бородин Ю.И., Любарский М.С. Лимфология. Новосибирск: Манускрипт, 2012. 1104 с.

5. Стефанов С.Б. Морфометрическая сетка случайного шага как средство ускоренного измерения элементов морфогенеза // Цитология. 1974. 16. (6). 785-787.

6. Теплая Г.А. Тяжелые металлы как фактор загрязнения окружающей среды // Астрах. вестн. экол. образования. 2013. 23. (1). 182-192.

7. Aperia A.J. To serve and protect: classic and novel roles for Na+, K+-adenosine triphosphatase // Am. Soc. Nephrol. 2012. 23. (8). 1283-1290.

8. Attali B., Romey G., Honoré E., Schmid-Alliana А., Mattéi M.G., Lesage F., Ricard Р., Barhanin J., Lazdunski М.J. Cloning, functional expression, and regulation of two K+ channels in human T lymphocytes // Biol. Chem. 1992. 267. (12). 8650-8657.

9. Betterman K.L., Harvey N.L. The lymphatic vasculature: development and role in shaping immunity // Immunol. Rev. 2016. 271. 276-292.

10. Chełchowska M. Jabłonka-Salach K., Ambroszkiewicz J., Maciejewski T., Gajewska J., Bulska E., Laskowska-Klita T., Leibschang J., Barciszewski J. Effect of cigarette smoking on blood lead levels in pregnant women // Med. Wieku Rozwoj. 2012. 16. (3). 196-204.

11. Corsetti G., Romano C., Stacchiotti A., Pasini E., Dioguardi F. Endoplasmic reticulum stress and apoptosis triggered by sub-chronic lead exposure in mice spleen: a histopathological study // Biol. Trace Elem. Res. 2017. 178. (1). 86-97.

12. Cottier H., Turk J., Sobin L. A proposal for a standardized system of reporting human lymph node morphology in relation to immunological function // J. Clin. Pathol. 1973. 26. (5). 317-331.

13. Fenga C., Gangemi S., di Salvatore V., Falzone L., Libra M. Immunological effects of occupational exposure to lead // Mol. Med. Rep. 2017. 15 (5). 3355-3360.

14. Gorchakova O.V., Borodin Y.I., Gorchakov V.N. Lymph nodes of different localization: aging and correction. Saarbrucken: Lap Lambert, 2017. 350 p.

15. Jing M.Y., Sun J.Y., Weng X.Y., Wang J.F. Effect of zinc deficiency on intestinal mucosal morphology and digestive enzyme activity in growing rat // Zhonghua Er Ke Za Zhi. 2011. 49. (4). 249-254.

16. Rosenkranz E., Hilgers R.D., Uciechowski P., Petersen A., Plümäkers B., Rink L. Zinc enhances the number of regulatory T cells in allergen-stimulated cells from atopic subjects // Eur. J. Nutr. 2017. 56. (2). 557-567.

17. Zhang Y., Huo X., Cao J., Yang T., Xu L., Xu X. Elevated lead levels and adverse effects on natural killer cells in children from an electronic waste recycling area // Environ. Pollut. 2016. 213. 143-150.