Влияние окисленного декстрана на морфологию семенников крыс Вистар при остром токсическом воздействии

Исследование состоятельности сперматогенного эпителия при токсических поражениях и их коррекции в эксперименте необходимо для понимания возможностей восстановления репродуктивной функции в условиях нарастающего техногенного загрязнения. Цель исследования – оценить уровень патоморфологических изменений семенников крыс Вистар и интенсивность стероидогенеза при введении эндотоксина липополисахарида (ЛПС) Escherichia coli и последующей коррекции интоксикации назначением окисленного декстрана. Материал и методы. Формировали три группы крыс Вистар с интраперитонеальным введением: 2 мл 0,9%-го раствора NaCl (n = 5, контроль); ЛПС E. coli в дозе 50 мкг/кг массы тела (n = 5); ЛПС E. coli в той же дозе с последующим введением 2 мл 2%-го раствора окисленного декстрана (ОД) (n = 5). Оценивали содержание в сыворотке крови тестостерона, патоморфологические изменения семенников. Результаты и их обсуждение. Введение ЛПС привело к умеренной гипотрофии сперматогенного эпителия в связи с уменьшением численной плотности сперматоцитов и сперматогоний (на 22,4 и 26,6 % соответственно), снижению численной плотности клеток Лейдига на 14,5 % и уровня тестостерона в 2,3 раза (у 80 % животных уровень тестостерона варьировал от 4,3 до 2,0 нмоль/л). Введение ОД после ЛПС обусловило увеличение диаметра семенных канальцев и высоты сперматогенного эпителия (на 2,9 и 3,3 % соответственно), численной плотности сперматоцитов и сперматогоний (на 16,8 и 14,6 % соответственно); также отмечен рост отношения числа сперматоцитов к количеству сперматогоний (на 6,8 %) по сравнению с контролем. Численная плотность клеток Лейдига выросла на 4 %, уровень тестостерона – в 1,7 раза (у 60 % животных уровень тестостерона варьировал от 12,7 до 37,3 нмоль/л) по сравнению с введением ЛПС. Заключение. Однократное введение ОД после острого воздействия эндотоксином ЛПС E. coli инициировало начало восстановления гистологической структуры сперматогенного эпителия семенных канальцев.

1. Tirpák F., Greifová H., Lukáč N., Stawarz R., Massányi P. Exogenous factors affecting the functional integrity of male reproduction. Life (Basel). 2021;11(3):213. doi: 10.3390/life11030213

2. Литвинова Н.А., Лесников А.И., Толочко Т.А., Шмелев А.А. Эндогенные и экзогенные факторы, влияющие на мужскую фертильность. Фундам. и клин. мед. 2021;6(2):124–135. doi: 10.23946/2500-0764-2021-6-2-124-135

3. Pizzol D., Foresta C., Garolla A., Demurtas J., Trott M., Bertoldo A., Smith L. Pollutants and sperm quality: a systematic review and meta-analysis. Environ. Sci. Pollut. Res. 2021;28(4):4095–4103. doi: 10.1007/s11356-020-11589-z

4. Демяшкин Г.А., Корякин С.Н., Вадюхин М.А., Щекин В.И. Морфологическая характеристика семенников в условии коррекции гипосперматогенеза (экспериментальное исследование). Крым. ж. эксперим. и клин. мед. 2021;11(2):6–10. doi: 10.37279/2224-6444-2021-11-2-6-10

5. Логинов П.В., Николаев А.А. Коррекция сперматогенеза в условиях воздействия микроволнового излучения КВЧ-диапазона. Фундам. исслед. 2015;(2-14):3085–3090.

6. Запривода Л.П., Остапенко О.В., Яценко В.П. Сравнительная характеристика морфологических методов оценки гонадотоксичного эффекта факторов окружающей среды. Математические исследования в естественных науках. 2015;(12):171–179.

7. Камилов Ф.Х., Галимов Ш.Н., Аглетдинов Э.Ф., Галимова Э.Ф., Хабиров Р.Э. Гормонально-метаболические нарушения репродуктивной функции в условиях отравления хлорорганическими соединениями. Мед. вестн. Башкортостана. 2007;2(3-4):42–46.

8. Боровская Т.Г., Дыгай А.М., Жданов В.В., Румпель О.А., Пахомова А.В., Перова А.В., Зюзьков Г.Н., Гольдберг В.Е. Способ коррекции нарушений сперматогенеза, вызванных цитостатическим воздействием. Пат. 2406527 РФ, опубл. 20.12.2010.

9. Поплавская Е.А., Лис Р.Е. Влияние бактериального липополисахарида Escherichia coli, введенного самцам крыс, на активность некоторых ферментов в цитоплазме сперматоцитов первого порядка. Вестн. ВГМУ. 2013;12(4):50–56.

10. Гюлазян Н.М., Белая О.Ф., Малов В.А., Пак С.Г., Волчкова Е.В. Липополисахариды/эндотоксины грамотрицательных бактерий: роль в развитии интоксикации. Эпидемиол. и инфекц. болезни. 2014;(2):11–16.

11. Калинченко С.Ю., Тюзиков И.А. Окислительный стресс и мужское бесплодие взаимосвязанные пандемии XXI в. Современные фармакотерапевтические возможности патогенетической коррекции нарушений сперматогенеза препаратами L-карнитина/ацетил-L-карнитина. Эффектив. фармакотерапия. 2017;(22):6–19.

12. Громова О.А., Торшин И.Ю., Гришина Т.Р., Малявская С.И. О ролях витамина D в профилактике и терапии мужского бесплодия. Качественная клиническая практика. 2017;(3):61–71.

13. Шкурупий В.А., Копылов А.Н., Троицкий А.В. Способ получения окисленного декстрана. Пат. 2618341 РФ; опубл. 03.05.2017.

14. Шкурупий В.А. Туберкулезный гранулематоз. Цитофизиология и адресная терапия. М.: Изд-во РАМН, 2007. 536 с.

15. Ernst C., Eling N., Martinez-Jimenez C.P., Marioni J.C., Odom D.T. Staged developmental mapping and X chromosome transcriptional dynamics during mouse spermatogenesis. Nat. Commun. 2019;10(1):1–20. doi: 10.1038/s41467-019-09182-1

16. Caroff M., Novikov A. Lipopolysaccharides: structure, function and bacterial identifications. OCL (Oilseeds and fats, crops and lipids). 2020;27(31):1–10. doi: 10.1051/ocl/2020025

17. AbuElhija M., Lunenfeld E., Eldar-Geva T., Huleihel M. Lipopolysaccharide increased the expression levels of IL-18, ICE and IL-18 R in murine leydig cells. Am. J. Reprod. Immunol. 2008;60(2):151–159. doi: 10.1111/j.1600-0897.2008.00607.x

18. Griffeth R.J., Bianda V., Nef S. The emerging role of insulin-like growth factors in testis development and function. Basic Clin. Androl. 2014;24(12). doi: 10.1186/2051-4190-24-12

19. Griffeth R.J., Carretero J., Burks D.J. Insulin receptor substrate 2 is required for testicular development. PLoS One. 2013;31;8(5):e62103. doi: 10.1371/journal.pone.0062103

20. Gac F.L., Loir M., le Bail P.Y., Ollitrault M. Insulin-like growth factor (IGF-I) mRNA and IGF-I receptor in trout testis and in isolated spermatogenic and Sertoli cells. Mol. Reprod. Dev. 1996;44(1):23–35. doi: 10.1002/(SICI)1098-2795(199605)44:1<23::AID-MRD3>3.0.CO;2-V

21. Pelletier R.M., Layeghkhavidaki H., Vitale M.L. Glucose, insulin, insulin receptor subunits α and β in normal and spontaneously diabetic and obese ob/ob and db/db infertile mouse testis and hypophysis. Reprod. Biol. Endocrinol. 2020;18(1):25. doi: 10.1186/s12958-020-00583-2

22. Новикова Е.Г., Троицкий А.В., Селятицкая В.Г., Ука Г.У., Нотов К.Г., Титяев И.И., Тихонов И.В. Динамика показателей спермограммы мужчин с хроническим простатитом, ассоциированным с вторичным бесплодием на фоне применения свечей андроэксперт SV1. Урология. 2022;(2):59–65. doi: 10.18565/urology.2022.2.59-65

23. Novikova E.G., Troitsky A.V., Bystrova T.N., Churina E.H., Urazova O.I. Pathophysiological mechanisms of the therapeutic effectiveness of oxidized dextrane in violations of spermatogenesis of infectious and inflammatory genesis. Acta Scientific Medical Sciences. 2024;8(6). doi: 10.31080/ASMS.2024.08.1834