Девясил высокий: обзор фармакологических эффектов действующих веществ при заболеваниях бронхолегочной системы

Хронические заболевания бронхолегочной системы достигли уровня эпидемии во всем мире, и положение ухудшается по мере того как увеличивается степень урбанизации. Девясил высокий называют русским женьшенем, поскольку действующие вещества его корня оказывают многоплановый эффект на организм. При заболеваниях бронхолегочной системы они способствуют отхаркиванию мокроты, стимулируют кровообращение и насыщают кровь кислородом, обладают иммуномодулирующим действием, что помогает бороться с вирусными и бактериальными инфекциями легких. Особенно актуально применение препаратов девясила для лечения туберкулеза легких, микоплазменной респираторной инфекции и вирусных инфекций, таких как COVID-19, герпес-вирусы, которые могут провоцировать серьезные изменения легких, в том числе пневмофиброз и пневмосклероз, формирующиеся в течение трех месяцев и более, а образовавшиеся очаги фиброза не подвержены инволюции. В то же время на стадии развития процесса фиброзные изменения можно минимизировать как медикаментозным, так фитотерапевтическим способом. Противовирусное действие препаратов девясила может сыграть роль в модификации или замедлении прогрессирования легочного фиброза, особенно при использовании на ранней стадии. При бронхиальной астме препараты девясила способны ослабить иммунно-воспалительную реакцию.

1. Зеленская К.Л., Пашинский В.Г., Поветьева Т.Н., Нестерова Ю.В. Девясил высокий – адаптоген и антигипоксант. Томск: Изд-во ТГПУ, 2004. 204 с. 2. Rasulova M.O. Study of the chemical composition of the Inula helenium plant. European Scholar Journal. 2021;2(3):58–61.

2. Матасова С.А., Митина Н.А., Рыжова Г.Л., Жуганов Д.О., Дычко К.А. Получение сухого экстракта из корней девясила высокого и изучение его химического состава. Химия растит. сырья. 1999;(2):119–123.

3. Артемьева В.А., Ямашев Т.А., Панкратова Т.А., Полтанова К.С., Решетник О.А. Исследование антиоксидантных и антирадикальных свойств экстрактов корней и корневищ девясила (Inula L.) Вестн. технол. ун-та. 2017;20(20):109–111.

4. Хлебцова Е.Б., Батаев Х.М. Клиническая фармакология: учебное пособие в схемах, тестах и задачах. Грозный: Изд-во ФГБОУ ВО «Чеченский государственный университет», 2020. 112 с.

5. Бубенчикова В.Н., Азарова А.В. Состав и отхаркивающая активность водорастворимых полисахаридных комплексов девясила иволистного. Науч. ведомости БелГУ. Сер. Естеств. науки. 2011;(15-2):189–191.

6. Учасова Е.Г. Регуляция активности макрофагов полисахаридами мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного, календулы лекарственной, девясила высокого: автореф. дис. … канд. мед. наук. Томск, 2009.

7. Петров Р.В., Хаитов P.M., Некрасов А.В., Аттаулаханов Р.И., Пучкова Н.Г., Иванова А.С., Пинегин Б.В., Хамидуллина К.Ф., Дамбаева С.В., Климова С.В. Полиоксидоний: механизм действия и клиническое применение. Мед. иммунол. 2000; 2(3):271–278.

8. Данилец М.Г. Фармакологическая регуляция функционального состояния макрофагов при иммунном ответе: автореф. дис. … докт. биол. наук. Томск, 2011.

9. Pearson G., Robinson F., Beers Gibson T., Xu B.E., Karandikar M., Berman K., Cobb M.H. Mitogen-activated protein (MAP) kinase pathways: regulation and physiological functions. Endocr. Rev. 2001;22(2):153–183. doi: 10.1210/edrv.22.2.0428

10. Stojanovic-Radic Z., Comic L., Radulovic N., Blagojevic P., Denic M., Miltojevic A., Rajkovic J., Mihajilov-Krstev T. Antistaphylococcal activity of Inula helenium L. root essential oil: eudesmane sesquiterpene lactones induce cell membrane damage. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2012;31(6):1015–1025. doi: 10.1007/s10096-011-1400-1

11. Пухов С.А., Неганова М.Е., Аникина Л.В., Шевцова Е.Ф., Афанасьева С.В., Клочков С.Г. Ингибирование роста клеток аденокарциномы молочной железы эпоксиалантолактоном и его производными. Фундам. исслед. 2014;9(9):1988–1992.

12. Бурова Л.Г., Широких И.В., Патрушев С.С., Толстикова Т.Г., Шульц Э.Э. Взаимосвязь структура – антибактериальная активность в ряду производных изоалантолактона. Фундам. и клин. мед. 2017;2(1):28–34.

13. Пожилова Е.В., Новиков В.Е., Левченкова О.С. Активные формы кислорода в физиологии и патологии клетки. Вестн. Смол. гос. мед. акад. 2015;14(2):13–22.

14. Симбирцев А.С., Тотолян А.А. Цитокины в лабораторной диагностике. Инфекц. болезни: новости, мнения, обучение. 2015;(2):82–98.

15. Flannagan R.S., Kuiack R.C., McGavin M.J., Heinrichs D.E. Staphylococcus aureus uses the GraXRS regulatory system to sense and adapt to the acidified phagolysosome in macrophages. mBio. 2018;9(4):e01143–18. doi: 10.1128/mBio.01143-18

16. Mosser D.M., Edwards J.P. Exploring the full spectrum of macrophage activation. Nat. Rev. Immunol. 2008;8(12):958–969. doi: 10.1038/nri2448

17. Kreider T., Anthony R.M., Urban J.F.Jr., Gause W.C. Alternatively activated macrophages in helminth infections. Curr. Opin. Immunol. 2007;19(4):448–453. doi: 10.1016/j.coi.2007.07.002

18. Liu Y.C., Zou X.B., Chai Y.F., Yao Y.M. Macrophage polarization in inflammatory diseases. Int. J. Biol. Sci. 2014;10(5): 520–529. doi: 10.7150/ijbs.8879

19. Левинсон У. Медицинская микробиология и иммунология. М.: Лаборатория знаний, 2020. 1181 с.

20. Тараховский Ю.С., Ким Ю.А., Абдрасилов Б.С., Музафаров Е.Н. Флавоноиды: биохимия, биофизика, медицина. Пущино: Sуnchrobook, 2013. 310 c.

21. Лушова А.А., Жеремян Э.А., Астахова Е.А., Спиридонова А.Б., Бязрова М.Г., Филатов А.В. Субпопуляции В-лимфоцитов: функции и молекулярные маркеры. Иммунология. 2019;40(6):63–76. doi: 10.24411/0206-4952-2019-16009

22. Лесиовская Е.Е. Доказательная фитотерапия: руководство для врачей и провизоров. СПб.: Фитотайм, 2020. Т. 3. 397 с.

23. Лазуткина Е.Л., Лазаренко Л.Л., Ландышев Ю.С., Цырендоржиев Д.Д., Ландышев С.Ю. Эффективность применения индуктора интерферона в период обострения бронхиальной астмы на фоне острой респираторно вирусной инфекции. Бюл. физиол. и патол. дыхания. 2012;(43):23–27.

24. Duckworth A., Longhurst H.J., Paxton J.K., Scotton C.J. The role of herpes viruses in pulmonary fibrosis. Front. Med. (Lausanne). 2021;8:704222. doi: 10.3389/fmed.2021.704222

25. Funes S.C., Rios M., Escobar-Vera J., Kalergis A.M. Implications of macrophage polarization in autoimmunity. Immunology. 2018;154(2):186–195. doi: 10.1111/imm.12910

26. Wermuth P.J., Jimenez S.A. The significance of macrophage polarization subtypes for animal models of tissue fibrosis and human fibrotic diseases. Clin. Transl. Med. 2015;4:2. doi: 10.1186/s40169-015-0047-4

27. Pechkovsky D.V., Prasse A., Kollert F., Engel K.M.Y., Dentler J., Luttmann W., Friedrich K., Müller-Quernheim J., Zissel G. Alternatively activated alveolar macrophages in pulmonary fibrosis-mediator production and intracellular signal transduction. Clin. Immunol. 2010;137(1):89–101. doi: 10.1016/j.clim.2010.06.017

28. Wang H., Wu J., Ma L., Bai Y., Liu J. The role of interleukin-1 family in fibrotic diseases. Cytokine. 2023;165:156161. doi: 10.1016/j.cyto.2023.156161

29. Клочков С.Г., Пухов С.А., Неганова М.Е., Дубровская Е.С., Аникина Л.В., Афанасьева С.В., Семаков А.В. Биологическая активность алантолактонов в экспериментах на клетках. Biomedical Chemistry: Research and Methods. 2018;1(3):e00047. doi: 10.18097/BMCRM00047

30. Qian B.-Zh., Pollard J.W. Macrophage diversity enhances tumor progression and metastasis. Cell. 2010;141(1):39–51. doi: 10.1016/j.cell.2010.03.014

31. Mantovani A., Marchesi F., Malesci A., Laghi L., Allavena P. Tumour-associated macrophages as treatment targets in oncology. Nat. Rev. Clin. Oncol. 2017;14(7):399–416. doi: 10.1038/nrclinonc.2016.217

32. Lewis C.E., Pollard J.W. Distinct role of macrophages in different tumor microenvironments. Cancer Res. 2006;66(2):605–612. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-05-4005

33. Sica A., Larghi P., Mancino A., Rubino L., Porta C., Totaro M.G., Rimoldi M., Biswas S.K., Allavena P., Mantovani A. Macrophage polarization in tumour progression. Semin. Cancer Biol. 2008;18(5):349–355. doi: 10.1016/j.semcancer.2008.03.004

34. Bui T.V., Ayari H., Baron S., Bertocchio J.P., Bureau C., Davis P., Blanchard A., Houillier P., Prie D., Lillo-Le Louet A., Courbebaisse M. Safety of inulin and sinistrin: combining several sources for pharmacovigilance purposes. Front. Pharmacol. 2021;12:725417. doi: 10.3389/fphar.2021.725417